В. наркозно-дыхательная аппаратура. Очистка и уход за небулайзером Дезинфекция стерилизация наркозно дыхательной аппаратуры

«Чем дезинфицировать небулайзер?» после его приобретения достаточно част. Не каждый производитель акцентирует на этом внимание. Попробуем разобраться.

С приобретением для домашнего использования небулайзера, появляются вопросы о том, как же им правильно пользоваться. Очень часто в инструкции написано только о том, как прибор необходимо использовать, но о том, как чистить и дезинфицировать детали – не сказано практически ничего.

Вот только дезинфекцию отдельных частей аппарата необходимо проводить по определенным правилам, ведь некоторые из них могут банально расплавится под воздействием высокой температуры, а некоторые выдерживают ее. Различные типы небулайзеров можно найти, к примеру, в крупнейшем интернет-магазине небулайзеров в Москве http://nebulyzer-shop.ru/ . К каждому из них прилагается инструкция по использованию и очистке прибора.

Правильный уход за небулайзером

Дезинфекция прибора должна проводиться часто, но допускается, что не после каждого использования. Особенно если этим прибором пользуется один человек. Но вот чистка деталей, особенно тех, которые соприкасались со слизистой, должна проводиться после каждого использования.

Проведение этой процедуры необходимо для того, чтобы не усугубить состояние здоровья, а также, чтобы в деталях прибора не распространились вредные микробы, способные привести к более серьезным последствиям. Поэтому и необходимо придерживаться алгоритма действий по очистке.

• После каждого использования необходимо промывать маску (мундштук или загубник), емкость для лекарства и фильтры в теплой воде с мылом.
• Тщательно промыв эти части их следует очень хорошо высушить, после чего собрать обратно.
• После каждого 3-го (некоторые производители рекомендуют 5-го) раза использования, части прибора необходимо дезинфицировать. Делать эту процедуру необходимо специальными средствами, которые рекомендует изготовитель, либо же прочими реактивами, о которых поговорим далее.

Чем дезинфицировать небулайзер и как правильно это делать

Для того чтобы избавится от остатков лекарственного препарата в небулайзерной камере, поддержать его чистоту и длительную работоспособность его необходимо периодически дезинфицировать. Чем дезинфицировать небулайзер и какими способами это можно сделать? Существуют такие способы:

1. Термическая обработка (кипячение деталей или использование паризатора);
2. Химическая обработка (различные препараты – спирт, перекись водорода и т.п.);
3. Автоклавирование.

Термическая обработка

Части небулайзера помещаются в емкость и кипятятся вместе с водой. Главное, чтобы вода покрывала полностью всю поверхность. Процедура кипячения должна длиться около 15 минут.

Химическая обработка

Химическая обработка необходима тем деталям, которые поддаются воздействию высоких температур. Например, маска для небулайзера может расплавиться, поэтому ее желательно обработать спиртом, перекисью водорода или специальными растворами дезактина. Части для очистки помещаются в специальный раствор, на время, указанное в инструкции, поле чего промываются проточной водой.

Дезинфекция в автоклаве

В этом случае детали стерилизуются при температуре до 137° С. Но также стоит обратить внимание на особенности материалов, из которых изготовлен небулайзер. К примеру, в каталоге небулайзеров Омрон http://nebulyzer-shop.ru/nebulajzery-omron можно найти подробное описание и комплектацию товаров с указанием всех характеристик.

Как видим, дезинфекция прибора для ингаляций необходима. Ведь в противном случае процесс выздоровления может затянуться или вообще остановится. К тому же, если небулайзером пользуется вся семья, эту процедуру стоит проводить как можно чаще. Ведь способы очистки и дезинфекции просты и доступны для домашнего использования.

Во время наркоза и искусственной вентиляции легких вместе с выдыхаемым воздухом в аппарат поступает микрофлора из легких и полости рта больного. Больше всего микробов скапливается в шлангах вдоха и выдоха, в сборнике конденсата, который является «рассадником» микробов, в патрубке выдоха и в увлажнителе. Чаще всего обнаруживаются кишечная и синегнойная палочки, протей, различная кокковая флора, в том числе гемолитический и негемолитический стафилококк.

Заражение по схеме- больной- аппарат- больной считается одной из главных причин послеоперационных пневмоний, и поэтому стерилизацию наркозной дыхательной аппаратуры надо расценивать как важный элемент борьбы с госпитальной инфекцией. Следует придавать особое значение механической очистке узлов этих аппаратов, причем ее надо проводить как можно раньше после окончания наркоза или ИВЛ. Отмывание просвета шлангов до высыхания содержимого снижает бактериальную загрязненность аппаратуры, а оставление ее грязной способствует размножению микробов в мокроте, осевшей внутри аппарата. Чем позднее приступают к промыванию шлангов других узлов аппаратуры, тем труднее добиться хорошей механической очистки их. При обеззараживании наркозной дыхательной аппаратуры возникают две проблемы: выбор метода стерилизации и сохранение стерильности аппаратов до их использования. Вторая проблема решается просто: простерилизованный аппарат накрывают стерильной простыней или пластиком. Трубки для интубации кипятят перед использованием или хранят стерильными в асептическом растворе: 6% раствор перекиси водорода, 96% спирте. Наркозные и дыхательные аппараты разбирают на основные узлы, которые стерилизуют после тщательного промывания.

Обеззараживание аппаратов для ингаляционного наркоза и искусственной вентиляции легких слагаются из 7 этапов:

1. предварительное промывание в течение 5 мин. под струей холодной, затем теплой и горячей воды как можно раньше после использования аппарата.

2. замачивание, т.е. погружение полностью с заполнением всех полостей обрабатываемых деталей в бачок, раковину или ванну, наполненные моющим раствором (температура 50 градусов) на 15-20 мин.

3. мытье каждой детали при помощи ерша или ватно- марлевого тампона в течение 30-45 мин.

4. прополаскивание. Вначале каждую деталь прополаскивают проточной водой: при использовании моющего раствора в течение 3-5 мин., затем ополаскивают в дистиллированной воде 30 секунд.

5. сушка горячим воздухом в сушильном шкафу при температуре 85 градусов до исчезновения влаги. При отсутствии сушильного шкафа просушивание проводится стерильным полотенцем.

6. холодная стерилизация узлов, не подлежащих термической обработке. Погружение в один из антисептических растворов: 3-6 % раствор перекиси водорода (при температуре 40-50градусов) на 60 мин. металлические детали стерилизуют кипячением или автоклавированием.

7. отмывание деталей стерильной водой и просушивание в асептических условиях (завернутыми в стерильное полотенце) в сушильном шкафу.

Следует отдавать предпочтение холодной стерилизации 3 или 6% раствором перекиси водорода, увеличивая при сильном загрязнении аппарата экспозицию до 3 часов.

Стерилизация аппаратов искусственного кровообращения и искусственной почки .

Эффективность стерилизации аппаратов искусственного кровообращения (АИК) и искусственной почки во многом зависит от качества предстерилизационной очистки, которая должна начаться тотчас после окончания работы аппарата. Особое внимание уделяется тщательному отмыванию от крови всех трубок и узлов аппаратов, соприкасавшихся с кровью. Эта процедура проводится по принципам, описанным выше. Полихлорвиниловые и другие трубки лучше всего использовать однократно.

Полноценное обеспечение асептики обеспечивается в централизованных стерилизационных отделениях и должно выполняться высококвалифицированными людьми. ЦСО разделяются на 2 зоны: «грязную», или правильнее, приемно- подготовительную, зону и чистую. В первую зону поступают биксы с нестерильным материалом. Персонал ЦСО осматривает их, убеждаясь в их прочности и пригодности, регистрирует, а затем погружает в автоклав и проводит стерилизацию. По окончании цикла отворяют двери автоклава, ведущие в чистую зону, и вынимают простерилизованные биксы. При переходе из приемной зоны в чистую проводится смена халата и мытье рук, одевается стерильная маска. Готовый к работе стерильный материал укладывают на стеллажи в чистой зоне. В чистой зоне проводится контроль качества стерильности.

Обеззараживание аппаратов ИВЛ является необходи­мой мерой для предупреждения перекрестного инфицирования больных и профилактики внутрибольничной ин­фекции.

Дыхательный контур аппаратов - это полая газопроводящая система, которая находится в тесном контакте с воздухом, выдыхаемым и вдыхаемым больными. Бакте­риальному обсеменению подвергаются элементы дыхательного контура, которые находятся в непосредственном контакте с кожей и слизистой оболочкой дыхательных пу­тей больных (лицевые маски, трахеальные трубки, трахеостомические канюли, мундштуки-загубники и т.д.) Уста­новлено также распространение микроорганизмов с потоком выдыхаемого газа по линии выдоха дыхательного кон­тура, откуда при работе по реверсивному (закрытому, по­лузакрытому) дыхательному контуру микрофлора свобод­но проникает в линию вдоха . Однако и при работе по нереверсивному (открытому, полуоткрытому) дыхательному контуру узлы аппаратов, составляющие ли­нию вдоха, также подвергаются бактериальному загряз­нению. В первую очередь это касается присоединительных элементов (коннекторов, адаптеров, тройников, всевоз­можных соединительных трубок и т.д.), составляющих так называемую неразделенную часть дыхательного кон­тура, но микрофлора проникает также и в шланг вдоха. Этому способствует диффузия водяных паров, несущих микроорганизмы, пульверизационный (разбрызгивающий) эффект газовой струи, кашель больных внутрь аппарата, так называемый эффект перепуска клапанов вдоха и т.д.

При работе по нереверсивному контуру, если выдыхае­мый газ по шлангу выдоха поступает в аппарат (это свой­ственно большинству аппаратов ИВЛ), а не выходит наружу непосредственно из нереверсивного клапана, инфицирование больного может наступить в результате стекания из шланга выдоха в дыхательные пути больного кон­денсата, обильно насыщенного патогенной микрофлорой. Наконец, необходимо учитывать поступление в дыхатель­ные пути больного бактериальной микрофлоры окружаю­щего воздуха, зараженность которого может быть значи­тельно увеличенной также за счет выброса патогенных микроорганизмов из линии выдоха аппаратов, особенно при одновременной ИВЛ у нескольких больных в одном помещении.

Таким образом, можно считать доказанным как сам факт обсеменения аппаратов бактериальной микрофлорой, так и возможность перекрестного инфицирования ею боль­ных [Вартазарян Д.В., Курпосова Л.М. и др., 1980; Lumley, 1976]. Однако если возможность внесения бактерий в дыхательные пути доказана, то все еще спорным остается вопрос о последствиях такого инфицирования. Достаточно ли количество микроорганизмов и настолько ли они виру­лентны, чтобы преодолеть иммунологические барьеры и, в частности, фагоцитарную активность слизистой оболочки дыхательных путей и вызвать патологические процессы? Ряд исследователей выражают сомнение по этому поводу . Однако другие авторы счи­тают, что больные, у которых применяется дыхательная аппаратура, весьма подвержены респираторным заболе­ваниям. У многих из них организм ослаблен основным или сопутствующими заболеваниями, снижающими сопротив­ляемость; интубация или трахеостомия, а также само по себе воздействие ИВЛ, особенно при недостаточном увлаж­нении и обогреве вдыхаемого газа, могут влиять на со­стояние слизистой оболочки и активность мерцательного эпителия дыхательных путей. Все это увеличивает опас­ность возникновения патологического процесса вслед за перекрестным инфицированием и делает необходимыми меры по обеззараживанию аппаратов искусственной вентиляции легких .

^ Микрофлора аппаратов и ее локализация. Микробная флора, обнаруживаемая в аппаратах ИВЛ, чрезвычайно разнообразна. Наиболее часто встречается золотистый, стафилококк, синегнойная палочка, пневмобактерия Фридлендера, негемолитический и зеленящий стрептококки, а также другие микроорганизмы, в том числе микобактерии туберкулеза.

Наибольшая бактериальная обсемененность наблюдает­ся в тройнике пациента и коннекторах, в шланге (особен­но гофрированном) и клапане выдоха, в увлажнителе и сборнике конденсата. Бактериальное загрязнение адсорбе­ра и испарителей анестетиков чрезвычайно мало, что мо­жет быть объяснено бактериостатическим действием на­тронной извести и жидких анестетиков. При прочих рав­ных условиях бактериальное загрязнение металлических деталей значительно меньше, чем деталей из резины и особенно пластмасс. Объясняется это явлениями аутостерилизации за счет олигодинамического действия ионов ме­талла, а также тем, что гладкие металлические поверхно­сти не удерживают большого количества частиц, несущих микроорганизмы.

^ Некоторые определения. Обеззараживание (деконтаминация) - процесс, приводящий к устранению загряз­нения и снижению, вплоть до полного уничтожения, бак­териальной обсемененности объектов, подвергаемых соот­ветствующей обработке. Таким образом, обеззараживание - это общий термин, подразумевающий и очистку, и дезинфекцию, и стерилизацию.

Очистка - удаление инородных веществ с поверхно­стей объекта, приводящее к уменьшению (но не уничто­жению) бактериального загрязнения.

Дезинфекция - уничтожение только вегетативных (неспорообразующих) форм бактерий. Сравнительно не­давно этот термин относился к уничтожению только пато­генных микроорганизмов. Однако в настоящее время по­нятие «патогенный» и «непатогенный» микроорганизмы утратило свое абсолютное значение. Дезинфекция счита­ется достигнутой при уничтожении 99,99% бактерий.

Стерилизация - уничтожение всех микроорганиз­мов, в том числе вегетативных форм бактерий, спор, виру­сов; не может иметь места понятие «практически сте­рильный»: объект может быть либо стерильным, либо нестерильным.

^ МЕТОДЫ ОБЕЗЗАРАЖИВАНИЯ

Сложность устройства аппаратов ИВЛ, наличие в их конструкции труднодоступных участков, а также различ­ных по физико-химическим свойствам материалов ограни­чивают применение многих широко используемых методов и средств дезинфекции и стерилизации. Поэтому ни в ко­ем случае не следует игнорировать любые доступные ме­тоды обеззараживания, приводящие если не к полному уничтожению, то к значительному снижению бактериаль­ной загрязненности аппаратов.

^ Очистка аппаратов. Обязательным условием надежности обеззараживания аппаратов является предварительная или так называемая предстерилизационная очистка. Она должна уменьшить количество микроорганизмов и уда­лить пирогенные вещества, кусочки тканей и органические остатки, которые могут быть токсичными сами по себе или препятствовать дальнейшему процессу дезинфекции или стерилизации.

Наиболее широко распространенным методом очистки является применение водных растворов моющих средств. При этом съемные и разборные детали, а также присоеди­нительные элементы аппаратов подвергаются очистке (мойке) путем полного погружения в растворы, а поверх­ности частей или весь аппарат, если они не могут быть погружены в растворы, подвергаются протиранию моющи­ми средствами.

Существуют следующие способы мойки: ручной, меха­низированный с помощью специальных моечных машин и ультразвуковой.

Ручная мойка деталей аппаратов и при­соединительных элементов. Процесс мойки включает ряд последовательных этапов:

1. Разборка узлов, снятие шлангов, присоединительных элементов, крышек клапанных коробок, отсоединение и опорожнение сборников конденсата и т.д.

2. Предварительная промывка разобранных узлов, кото­рую осуществляют под струёй очень теплой проточной во­ды с мылом и как можно быстрее после применения ап­паратов.

3. Замачивание, при котором раствор проникает через загрязняющие наложения, размягчает их и отделяет от поверхности объектов. Обрабатываемые элементы погру­жают на 15 мин в свежеприготовленный горячий раствор моющего средства. Последнее необходимо выбирать по его детергентным свойствам, а не по дезинфицирующему дей­ствию.

Согласно рекомендациям Всесоюзного научно-исследова­тельского института дезинфекции и стерилизации (ВНИИДиС), лучшие результаты мойки обеспечиваются применением 0,5% раствора перекиси водорода и моющего средства («Новость», «Лотос», «Астра», «Прогресс», «Сульфанол», «Триас-А»). Синтетические моющие сред­ства в 0,5% концентрации обладают высокой моющей спо­собностью, хорошо разрыхляют различного рода загрязне­ния, не влияют на качество металла, пластмасс, резины и легко с них смываются. При температуре 50°С актив­ность моющих растворов возрастает.

Для приготовления 1 л моющего раствора 0,5% концент­рации следует брать 20 мл пергидроля (30-33% Н 2 О 2), 975 мл водопроводной воды, нагретой до 50°С, и 5 г мою­щего средства.

4. Окончательная мойка осуществляется в том же рас­творе, в котором были замочены элементы и детали аппа­ратов. Детали моют ватно-марлевыми тампонами или пы­жами. Не следует пользоваться для мытья щетками или «ершами», от которых могут остаться на внутренних по­верхностях деталей щетинки. Марлевые тампоны и пыжи после однократного использования следует выбрасывать.

5. Прополаскивание после мойки удаляет с деталей остатки моющего раствора. Вымытые детали прополаски­вают сначала в проточной, а затем в дистиллированной воде.

Предварительную промывку, замачивание и мойку де­талей удобно проводить в любой моечной установке, имею­щей две рядом расположенные раковины. Пензенский за­вод «Дезхимоборудование» выпускает специальную мойку с двумя отделениями, снабженную смесителем для холод­ной и горячей воды с душевой сеткой на гибком шланге. Такая мойка входит в «Комплекс оборудования для осна­щения центра обработки наркозно-дыхательной аппара­туры».

6. Сушка. Чистые детали выкладывают на стерильную простыню и тщательно высушивают. Если детали не будут подвергаться дальнейшему обеззараживанию, то сушка важна потому, что влага способствует росту грамположительных бактерий. Если же для дальнейшего обеззаражи­вания применяется жидкий дезинфектант, то остатки воды на поверхности деталей будут разбавлять раствор дезинфектанта и понизят его эффективность.

Очистка, проведенная по указанной выше методике, по данным ВНИИДиС, снижает бактериальную обсемененность в 1000 раз.

Ручная мойка имеет ряд недостатков: большие трудо­затраты, прямое соприкосновение рук персонала с загряз­ненными деталями и моющим раствором, невозможность строго регламентировать качество очистки, которое зави­сит от квалификации и усердия персонала. Поэтому все более широкое применение находит способ механи­зированной мойки. Он осуществляется в специаль­ных моечных машинах. Заводом «Дезхимоборудованне» выпускается «Машина моечная стационарная для элемен­тов наркозно-дыхательной аппаратуры». Она входит в со­став упомянутого выше комплекса. После предваритель­ной промывки и замачивания детали помещают в специ­альную кассету, которую устанавливают в моечную машину. В автоматическом режиме в течение 30 мин осущест­вляется мойка деталей горячим (45°С) раствором синте­тических моющих средств и прополаскивание. Кассета с вымытыми деталями перемещается на специальной по­движной стойке и устанавливается в гнезде сушильного устройства. Сушка деталей осуществляется потоком фильтрованного воздуха, нагретого до 60°С.

В последние годы используются ультразвуковые мою­щие установки, производящиеся во многих странах. Уль­тразвуковая очистка достигается благодаря кавитации, возникающей под действием ультразвука, а также вслед­ствие «эффекта перемешивания» растворителей.

В ультразвуковом дезинфекционном промывателе модели RS-500D фирмы «Татэбэ» (Япония) сочетание ультразвуковых воздействий мощностью до 600 Вт с покачиванием моечной камеры обеспечивает удаление воздуха из очищаемых изделий и перемешивание моющего раствора, что повышает эффективность промывки. Мощная форсунка со скрещиванием струй обеспечивает быстрый и равномерный смыв. При­мерно через каждые 2 мин осуществляется автоматический спуск грязной воды. В медицинском ультразвуковом очистителе Ми-212 фир­мы «Шарп корпорейшн» (Япония), помимо очистки, осуществляется и дезинфекция за счет использования раствора хлоргексидина.

Универсальная ультразвуковая установка для очистки различного рода загрязнений лабораторной посуды, медицинского инструмента и мелких деталей выпускается и в нашей стране.

^ Дезинфекция аппаратов. Тепловые методы. Для обеззараживания аппаратуры наиболее широкое примене­ние находит так называемое влажное тепло.

Пастеризация. Детали погружают на 10-15 мин в воду, нагретую до 65-70°С. Погружение должно быть полным. Имеются специальные установки для пастериза­ции, представляющие собой водяные бани с нагревателя­ми и извлекаемыми сетками для деталей. Подвергшиеся пастеризации детали тщательно высушивают в стериль­ных простынях и сохраняют сухими в асептических усло­виях. Пастеризация разрушает большую часть неспорообразующих бактерий. Преимущества этого метода в его простоте и отсутствии повреждающего действия на ма­териал деталей.

Кипячение. Продолжающееся, не менее 30 мин ки­пячение при 100°С убивает все вегетативные (неспорообразующие) бактерии, большинство спорообразующих и почти все вирусы. Для надежной дезинфекции необходимо учитывать высоту над уровнем моря и на каждые 300 м подъема над уровнем моря удлинять время кипячения на 5 мин. Во избежание образования на деталях накипи сле­дует пользоваться дистиллированной водой. Для более эф­фективного разрушения спор, а также для предотвращения коррозии металлов рекомендуется подщелачивать воду добавлением гидрокарбоната натрия в количестве 20 г/л. Все детали при кипячении должны быть покрыты слоем воды не менее 5 см. После кипячения, как и после пастериза­ции, детали должны быть высушены и законсервированы в асептических условиях. Достоинство метода - его простота, эффективность, доступность. Недостаток - кумуля­тивное разрушающее действие по отношению к нетермо­стойким материалам аппаратов.

Химические методы. Все химические дезинфектанты должны быть высокоэффективными, простыми в эксплуатации и позволяющими избежать токсического дей­ствия для больных и персонала, не должны разрушать материал аппаратов при многократной дезинфекции. Сле­дует учитывать, что ни один из дезинфектантов не гаран­тирует полного уничтожения всех вегетативных бактерий. Грамотрицательные микроорганизмы труднее убиваются химическими дезинфектантами, чем грамположительные. Туберкулезные и другие кислотоустойчивые бациллы обла­дают высокими свойствами сопротивления, а споры - еще большими.

Активность дезинфектантов возрастает при более высо­ких концентрациях и температурах растворов. Большие объемы растворов являются более эффективными при оди­наковой их концентрации; чем длительнее погружение, тем эффективнее обеззараживание (однако следует учиты­вать, что раствор дезинфектанта при нахождении в нем объектов дезинфекции считается действующим не более 24 ч). Все химические дезинфектанты инактивируются обильным промыванием водой, мылом, синтетическими детергентами.

Формальдегид. Бесцветный газ, хорошо раствори­мый в воде, с резким запахом. Водные растворы фор­мальдегида успешно применяются в качестве дезинфици­рующего средства в жидком и парообразном виде, обла­дают высокой бактерицидной активностью. В качестве жидкого дезинфектанта используют 3% раствор формаль­дегида, который заливают в плотно закрываемые емко­сти из стекла, пластмассы или эмалированного металла. Дезинфекцию производят при полном погружении деталей в раствор в течение 30 мин. Экспозицию увеличивают до 90 мин при инфицировании микобактериями туберкулеза. Для нейтрализации формальдегида детали промывают 10% раствором аммиака и погружают на 60 мин в сте­рильную воду, периодически прополаскивая до полного удаления остатков аммиака и запаха формальдегида.

Перекись водорода. Является хорошим окисли­телем. Эффективна преимущественно в отношении грамотрицательной флоры. Выпускается промышленностью в виде 30-33% водного раствора под названием «Пергид­роль». Для дезинфекции употребляют 3 % водный раствор, в который погружают детали на 80. мин. Прополаскивание, сушка и хранение деталей аналогичны описанным выше. В рекомендуемой концентрации растворы перекиси водо­рода не вызывают коррозии металлов, не портят резино­вые и пластмассовые поверхности.

Хлоргексидин (гибитан) . Фильтры, помещенные в линии вдоха аппаратов ИВЛ, за­щищают пациентов от инфицирования микроорганизмами с потоком вдыхаемого газа, а расположенные в линии вы­доха - предотвращают микробное обсеменение аппаратов и окружающей среды.

Фильтр включает стакан-корпус и патрон для филь­трующей ткани, которая обеспечивает защиту дыхатель­ных путей от бактерий и частиц размером свыше 5 мкм. Задерживающая способность фильтра «ФИБ-1» состав­ляет 99,99% при непрерывном прохождении воздуха, обсе­мененного микроорганизмами со скоростью 30 л/мин в течение не менее 11 ч. Сопротивление фильтра потоку не превышает 6 мм вод.ст.

В аппаратах ИВЛ применяются также противопылевые фильтры, устанавливаемые на патрубке, через который в аппарат поступает воздух окружающей атмосферы. По­скольку микроорганизмы в значительном количестве ад­сорбируются пылевыми частицами и иными воздушными взвесями, противопылевые фильтры осуществляют также антибактериальную защиту вдыхаемого воздуха. В аппа­ратах ИВЛ РО-6Н, РО-6Р и РО-6-03 на входе в аппарат установлены противопылевые устройства, включающие сменный бесклапанный противопылевой респиратор ШБ-1 («Лепесток-5»).

Ряд важных методических вопросов остаются нерешен­ными, например, когда следует проводить стерилизацию, а когда достаточна только дезинфекция аппаратов; с какой периодичностью и какими предпочтительными методами осуществлять обеззараживание; решать ли эти вопросы однозначно или дифференцированно для разных узлов и деталей аппарата и для всего аппарата в целом?

Можно было бы подходить к решению этих трудных во­просов с позиции максималистских требований: «все уз­лы», «весь аппарат в целом», «обязательно стерилизо­вать», «как можно чаще» и т.д. Но тогда возникает так называемая дилемма стерилизации : с од­ной стороны, желание идеального результата, а с дру­гой - высокая трудоемкость, необходимость значительного числа сменных запасных аппаратов и деталей к ним, ку­мулятивное разрушение материалов и более быстрый из­нос аппаратуры.

Однако бесспорно, что существует необходимость обез­зараживать аппараты ИВЛ. А это значит, что медицинский персонал, во-первых, должен знать методы очистки, дезин­фекции и стерилизации аппаратов ИВЛ, во-вторых, иметь соответствующее техническое оборудование для их выполнения, в-третьих, располагать такими аппаратами ИВЛ, конструкция и материалы которых дают возможность про­ведения наиболее предпочтительных и рациональных мето­дов обеззараживания.

Основные правила, изложенные в этой главе, а также в «Инструкции по очистке (мойке) и обеззараживанию ап­паратов ингаляционного наркоза и искусственной венти­ляции легких» и в ОСТе 42-2-2 - 77 «Стерилизация и дезинфекция изделий медицинского назначения. Методы, средства и режимы», должны стать основой разумных решений и действий, с одной стороны, медицинского персо­нала, а с другой - разработчиков медицинской аппара­туры.

Небулайзеры PARI LC SPRINT® и аксессуары к ним разработаны для многократного использования как в клинике, так и в домашних условиях.

Их необходимо очищать, дезинфицировать или стерилизовать после каждого использования. Для различных условий применения существуют разные рекомендации по очистке, дезинфекции и стерилизации.
ПОЧЕМУ НЕОБХОДИМО ОЧИЩАТЬ НЕБУЛАЙЗЕР?

Недостаточная или неэффективная дезинфекция способствует росту микроорганизмов и тем самым увеличивает опасность инфекции. Чтобы предотвратить риск для здоровья, необходимо строго следовать правилам гигиены.

Остатки медикамента не должны оставаться в резервуаре небулайзера
Попадание выдыхаемого пациентом воздуха в верхнюю часть камеры небулайзера приводит к распространению инфекции
Попадание мокроты при кашле во время ингаляции в верхнюю часть камеры небулайзера приводит к загрязнению
Необходима техническая очистка сопла

Спектр действия средства для дезинфекции и стерилизации

Подготовка к очистке
Отсоедините трубку-воздуховод от распылителя.
Разберите распылитель на составные части.
Осторожно выньте клапан выдоха на мундштуке из прорези. После этого клапан должен остаться висеть на мундштуке.

В домашних условиях (для одного пациента)

Использование в клинике (для многих пациентов)

1. Если пациент не меняется: Выполняйте чистку распылителя и используемых аксессуаров после каждой ингаляции. Выполняйте дезинфекцию распылителя и используемых аксессуаров не менее одного раза в день.
2. Если пациент меняется: Выполняйте чистку, дезинфекцию и стерилизацию распылителя и используемых аксессуаров перед каждой сменой пациента. Замените соединительный шланг, так как его невозможно подготовить для смены пациента. Распылитель разрешается стерилизовать до 300 раз или использовать не более 1 года. Запрещается подвергать распылитель и используемые аксессуары воздействию температуры выше 137 °C

НЕБУЛАЙЗЕР, МАСКИ ПЛАСТМАССОВЫЕ И СИЛИКОНОВЫЕ ДЛЯ ДЕТЕЙ И ВЗРОСЛЫХ, АКСЕССУАРЫ: СИСТЕМА PARI PEP S, TRACHEOSTOMA SET, ТРЕНАЖЕР PARI-O-PEP, PARI ФИЛЬТР-КЛАПАН

ВНИМАНИЕ! Детали изделия разрешается подвергать воздействию микроволнового излучения только в дезинфицирующем устройстве для микроволновой печи. Нагрев в микроволновой печи без соответствующего дезинфицирующего устройства ведет к повреждению деталей. Не используйте функцию гриля, это ведет к повреждению деталей. Хранение небулайзеров и аксессуаров ПАРИ: в клинике стерильные небулайзеры, маски и аксессуары хранить в стерильном пакете – 3 суток, в биксе – до 7 суток.

Семестр.

Тема: Основы анестезиологии. Местная и общая анестезия.

Алгоритмы практической деятельности.

НАБОР ДЛЯ ПРОВЕДЕНИЯ НОВОКАИНОВОЙ БЛОКАДЫ

Цели: Проведение новокаиновой блокады.

Показания: Различные оперативные вмешательства, с терапевтической целью

Противопоказания: Непереносимость к анестетику, обширные травматические оперативные вмешательства, возраст пациента.

Осложнений: нет

Оснащение: Кожный антисептик, перчатки, стерильный пинцет, маска, шприц 20 гр. ,новокаин, 1%, 0,25%, игла (10-12 см.), Стерильный материал, липкий пластырь.

НАБОР ДЛЯ ПРОВЕДЕНИЯ СПИННОМОЗГОВОЙ АНЕСТЕЗИИ,

ЛЮМБАЛЬНОЙ ПУНКЦИИ.

Цели: Проведение люмбальной пункции

Показания: Заболевания, травмы черепа и позвоночника.

Противопоказания: Непереносимость к препаратам новокаина, тяжесть состояния.

Осложнения: Инфицирование оболочек спинного мозга.

Оснащение: лидокаина, тримекаина, бупивакаина, Кожный антисептик, йод, перчатки, стерильный пинцет, маска, шприц 20 гр. ,новокаин, 0,25%, игла (10-12 см.), Стерильный материал, липкий пластырь, стерильный лоток, контейнер для отходов.

УХОД ЗА НАРКОЗНО ДЫХАТЕЛЬНОЙ АППАРАТУРОЙ

Цель: Обработка наркозно-дыхательной аппаратуры

Показания. Дезинфекция наркозного аппарата.

Противопоказания: Аллергическая реакция на хлорсодержащие препараты.

Оснащение: Резиновый фартук. Респиратор (или 8-слойная маска). Очки. Шапочка. Резиновые перчатки, Эмалированная емкость с крышкой. Бутыль из темного стекла с притертой пробкой для раствора состоящего (20 мл 30% пергидроля и 5 г. моющего порошка на 1 л горячей воды). Марлевые тампоны. Раствор 10% формалина или 3% раствор перекиси водорода. Простынь. Дистиллированная вода